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                分子克隆實(shí)驗(yàn)的流程及注意事項(xiàng)--三、同源重組(1)

                發(fā)布時(shí)間: 2025-03-19  點(diǎn)擊次數(shù): 61次

                本方法適用于總長度(載體 + 所有片段)不超過 20kb 的重組實(shí)驗(yàn)。

                分子克隆實(shí)驗(yàn)的流程及注意事項(xiàng)--三、同源重組(1)

                目的片段引物設(shè)計(jì)與PCR擴(kuò)增

                1.
                2.1.引物同源臂設(shè)計(jì)要求:15-20bp( 不計(jì)算酶切位點(diǎn) ),GC 含量 40%-60%;根據(jù)實(shí)驗(yàn)需求選擇對應(yīng)模塊進(jìn)行引物設(shè)計(jì);

                2.建議使用高保真酶進(jìn)行目的片段的 PCR 擴(kuò)增,并摸索退火溫度,優(yōu)化反應(yīng)體系和程序。


                載體線性化

                1.雙酶切:同時(shí)選擇兩種限制性內(nèi)切酶對載體質(zhì)粒進(jìn)行線性化處理。內(nèi)切酶選擇可參考第二章第一節(jié)內(nèi)容;

                2.單酶切:選擇一種限制性內(nèi)切酶對載體質(zhì)粒進(jìn)行線性化處理。內(nèi)切酶選擇可參考第二章第一節(jié)內(nèi)容;

                3.反向 PCR 擴(kuò)增:以載體質(zhì)粒為模板,以 PCR 擴(kuò)增形式進(jìn)行線性化。建議使用高保真酶擴(kuò)增,降低突變引入,且模板質(zhì)粒投入量不宜過多(50μl 投入 1ng),并使用 DpnI 對擴(kuò)增產(chǎn)物消化。


                目的片段和線性化載體的純化回收

                1.目的片段 PCR 和載體線性化后,產(chǎn)物進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳鑒定,判斷是否存在目的大小的條帶;

                2.推薦使用切膠回收的方式純化(切膠時(shí)間最好控制在 3min 內(nèi),避免紫外照射對 DNA 的傷),回收濃度使用 NanoDrop/OneDrop 等儀器檢測,濃度應(yīng)當(dāng)≥ 20ng/μl,并跑膠鑒定是否為單一目的條帶;

                3.回收濃度低時(shí),可通過增加 PCR/ 酶切反應(yīng)體系,采取多管反應(yīng)單管回收的方式,提高回收產(chǎn)物的濃度。

                目的片段與線性化載體連接重組

                1.連接反應(yīng)體系按照說明書要求計(jì)算投入量,體系中各組分投入體積≥ 1μl,若濃度過高可稀釋后使用;

                分子克隆實(shí)驗(yàn)的流程及注意事項(xiàng)--三、同源重組(1)

                感受態(tài)轉(zhuǎn)化涂板

                連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化的感受態(tài)細(xì)胞選擇使用 DH5α、Fast-T1 等克隆用化學(xué)感受態(tài)細(xì)胞;
                2. 感受態(tài)細(xì)胞不可反復(fù)凍融使用,-80°C取出后建議一次用完;
                3. 重組產(chǎn)物體積與感受態(tài)細(xì)胞體積的比例為 1:10,推薦 10μl 重組產(chǎn)物加入至 100μl 感受態(tài)
                細(xì)胞或 5μl 重組產(chǎn)物加入至 50μl 感受態(tài)細(xì)胞;
                4. 熱激時(shí)間:按照感受態(tài)細(xì)胞說明書操作進(jìn)行;
                5. 平板抗生素抗性:平板使用抗性與轉(zhuǎn)化的載體抗性需保持一致;
                6. 菌液涂板體積:將菌液離心(2500×g、3min),移液槍吸取丟棄多余 LB 培養(yǎng)基,保留
                100μl 重懸后全部涂板;或吸取合適體積涂板。


                單克隆菌落PCR鑒定
                1. 挑取平板中體積大小適中的單克隆菌落,避免選擇過大或過小的單克隆菌落;
                2. 挑取數(shù)個(gè)單克隆菌落進(jìn)行鑒定分析;
                3. 挑取的菌落放入已添加 10μl ddH 2 O 的 1.5ml 或 2ml EP 管中溶解混勻后,吸取 1-2μl 作為
                PCR 反應(yīng)(10/20μl 體系)模板;

                4. 推薦使用一對分別位于片段和載體的上下游引物進(jìn)行 PCR 鑒定。


                常見問題分析:
                不長克隆
                1. 引物同源臂設(shè)計(jì)錯(cuò)誤:長度(不計(jì)算酶切位點(diǎn))應(yīng)為 15-20bp 之間,過長過短均影響重組效率;GC 含量以 40-60% 之間最適,超出范圍會(huì)影響重組效率。建議使用 CE Design 在線設(shè)計(jì);
                2. 重組反應(yīng)體系不符合要求:片段和線性化載體的總長度不應(yīng)超過 20kb,應(yīng)當(dāng)切膠回收且回收濃度不低于 20ng/μl;濃度過高時(shí)需稀釋使用,保證體系投入體積不小于 1μl;投入量按
                照下表公式計(jì)算:

                分子克隆實(shí)驗(yàn)的流程及注意事項(xiàng)--三、同源重組(1)

                3. 連接反應(yīng)不適當(dāng):反應(yīng)應(yīng)在 PCR 儀中進(jìn)行,溫度、時(shí)間設(shè)置按照說明書進(jìn)行,當(dāng)同源臂GC 含量超過 60% 或連接片段數(shù)較多時(shí),可延長至 30min,其中 C112/C113 可將溫度時(shí)間改為 50°C 15min;
                4. 陽性對照反應(yīng):使用試劑盒中提供的線性化載體和插入片段,按說明書配制重組反應(yīng)體系,以排除其他實(shí)驗(yàn)材料及操作因素的影響;
                5. 轉(zhuǎn)化涂板操作不當(dāng):感受態(tài)細(xì)胞應(yīng)選用 DH5α、Fast-T1 等克隆用化學(xué)感受態(tài)細(xì)胞,不可使用電擊感受態(tài)細(xì)胞;重組產(chǎn)物體積與感受態(tài)體積的比例為 1:10;熱激時(shí)間按照感受態(tài)細(xì)胞說明書操作;平板使用抗性與載體抗性保持一致;涂板前將菌液離心(2500×g,3min),移液槍吸取丟棄多余 LB 培養(yǎng)基,保留100μl 重懸后全部涂板。















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